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NP详解 | RNA假尿苷图谱揭示了植物中rRNA、tRNA和mRNA Ψ修饰的多层调控机制

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英文标题:Quantitative RNA pseudouridine maps reveal multilayered translation control through plant rRNA, tRNA and mRNA pseudouridylation

发表期刊:Nature Plants

发表时间:2025.1.9(IF:15.8)

通讯作者:Professor Chuan He,美国芝加哥大学


研究背景


假尿嘧啶(Pseudouridine, Ψ)是RNA分子中的极为丰富的转录后修饰形式,广泛存在于rRNA、tRNA和mRNA中。Ψ修饰通过改变RNA的局部结构,影响RNA稳定性、核糖体功能及翻译效率,在真核生物的生命活动中具有重要的调控作用。例如,rRNA的Ψ修饰可调节核糖体活性,tRNA的Ψ修饰影响密码子识别效率,而mRNA的Ψ修饰可能通过改变翻译动力学影响蛋白质合成。然而,在植物领域,针对Ψ修饰的系统性研究却长期受限,主要原因包括:(1)缺乏高分辨率、定量化的检测方法;(2)植物特异性Ψ修饰酶的功能尚不明确;(3)不同RNA分子(rRNA、tRNA、mRNA)中Ψ修饰的协同调控机制未被阐明。


传统检测方法(如CMC化学标记法)灵敏度低且达到单碱基分辨率,难以满足深入研究的需求。近年来发展的Bisulfite-induced deletion sequencing(BID-seq)技术通过检测硫酸氢盐诱导的缺失信号,能够以单碱基精度绘制Ψ修饰图谱,并量化修饰化学计量。本研究利用BID-seq技术,首次在拟南芥、水稻、玉米和大豆等多种植物中系统绘制了rRNA、tRNA和mRNA的Ψ修饰图谱,结合多聚体分析和翻译效率评估,揭示了Ψ修饰在植物翻译调控中的多层次作用,为植物转录后修饰领域的研究开辟了新的方向。


技术路线


1. 样本设计与处理

植物物种:选择拟南芥(模式植物)、水稻(单子叶代表)、玉米(重要农作物)和大豆(双子叶豆科)作为研究对象,覆盖单子叶与双子叶植物。

组织类型:采集拟南芥9种组织(幼苗、根、莲座叶等)和水稻10种组织(胚芽、胚根、穗等),覆盖植物全生命周期。


2. Ψ修饰检测与定量

BID-seq技术:基于硫酸氢盐处理诱导Ψ位点的特异性缺失,通过高通量测序检测缺失信号,结合校准曲线计算Ψ修饰化学计量(Ψ分数)。

LC-MS/MS验证:采用液相色谱-串联质谱法测定poly(A) RNA中Ψ与U的比例,验证测序数据的可靠性。


3. 功能关联分析

多聚体分析:通过蔗糖密度梯度离心分离核糖体结合mRNA,结合RNA-seq数据计算翻译效率(TE)。

进化保守性分析:比较四种植物的rRNA和tRNA Ψ位点,识别保守修饰位点及其功能关联。

组织特异性分析:利用GO富集和聚类方法,解析mRNA Ψ位点的组织特异性分布及其生物学意义。


研究结果

1. rRNA Ψ修饰的进化保守性与全局翻译调控

通过 BID-seq 对多种植物的 rRNA 进行高分辨率图谱绘制,发现 rRNA 的 Ψ 修饰在不同植物物种中具有一定的保守性。在核编码的 rRNA(Nu-18S、Nu-5.8S、Nu-25S)、线粒体编码的 rRNA(Mt-26S、Mt-18S、Mt-5S)和叶绿体编码的 rRNA(Pt-16S、Pt-23S、Pt-4.5S、Pt-5S)中均检测到 Ψ 修饰位点(图 1a)。例如,在水稻、玉米、拟南芥和大豆中分别鉴定出 129、121、134 和 116 个 rRNA Ψ 位点,且核编码的 rRNA 中 Ψ 位点更为富集。同时,发现一些假尿苷合成酶在 rRNA Ψ 修饰中发挥重要作用,如 SVR1 可在水稻叶绿体编码的 23S rRNA 的特定位置(Pt-23S:Ψ2,702)添加 Ψ修饰,该位点在多个植物物种中均较为保守(图1b-e)。

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图1 BID-seq 揭示了单子叶植物和双子叶植物 rRNA 中在进化上保守的假尿苷化修饰



2. Ψ 修饰对翻译的调控作用

rRNA Ψ 修饰位点的化学计量比会影响翻译效率,不同的 Ψ 修饰位点对翻译效率的影响各不相同。总体而言,约 55.9% 的 rRNA Ψ 位点与翻译效率呈负相关,44.1% 呈正相关(图 2h)。进一步研究发现,mRNA 转录本的结构特征与 rRNA Ψ 位点的作用相关。具有较长 5′非翻译区(UTR)的 mRNA 转录本,其翻译效率与 rRNA 起始区域(如 Nu-18S:913)的 Ψ 修饰水平呈现出更强的正相关;编码序列(CDS)较长的 mRNA 转录本,其翻译效率与 rRNA 解码区域(如 Nu-18S:1,195)的 Ψ 修饰水平呈现出更强的正相关(图2i)。

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图2 rRNA 修饰位点的 Ψ 化学计量比会影响不同组织中的翻译过程



3. tRNA Ψ 修饰与翻译效率的关系

在拟南芥中,tRNA 的 Ψ 修饰与翻译效率存在关联。tRNA T-臂环区域的 Ψ 化学计量比与相应密码子的翻译效率呈强正相关(图 3a、b),反密码子臂环和 D-臂环中的 Ψ 与翻译效率也有正相关,但强度较弱,而在茎区域则无明显相关性。这表明在调节蛋白质生物合成或翻译过程中,tRNA的环区域可能比茎区域更关键。

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图3 tRNA 上的假尿苷(Ψ)化学计量比会影响不同植物组织中的翻译过程



4. mRNA Ψ 修饰位点的分布与特征

在不同植物物种的 mRNA 中鉴定出大量 Ψ 修饰位点,但这些位点在植物物种间几乎没有保守性。大部分 Ψ 位点高度富集在 CDS 区域,其次是 3’-UTR 和 5’-UTR(图 4a-c)。不同植物物种的 mRNA Ψ 修饰基序存在差异,如水稻、大豆和拟南芥中最富集的基序是 CΨC,而玉米中 GΨG 基序则更为富集(图 4d)。

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图4 BID-seq 在不同植物物种中鉴定出大量的 mRNA 假尿苷(Ψ)位点


5. mRNA Ψ 修饰的组织特异性及与 mRNA 的关系
mRNA Ψ 修饰在不同组织间存在差异。通过 LC-MS/MS检测发现,不同组织中 mRNA 的 Ψ 与 U 的比例变化较大,且大部分 Ψ 位点的修饰比例较低(<20%)。不同组织中存在较多特异性的 Ψ 位点,这些位点可能在组织分化和发育中发挥作用。例如,拟南芥种子特异性的 Ψ 位点在种子成熟途径中显著富集(图 5e),水稻胚胎中特异性的 Ψ 位点在胚胎后植物器官发育过程中富集(图 5f)。

在拟南芥幼苗中,较高的 mRNA Ψ 修饰比例与较低的 mRNA 稳定性相关,5’-UTR 的 Ψ 位点对 mRNA 稳定性影响更明显(图 6a、b)。然而,mRNA Ψ 水平与翻译效率呈正相关,且 5’-UTR 有 Ψ 修饰的转录本与翻译效率的相关性更显著(图 6c、d)。GO 富集分析表明,3’-UTR Ψ 相关的 mRNA 在光合作用相关途径中特异性富集,5’-UTR Ψ 相关的 mRNA 则参与多种刺激响应过程(图 6e、f)。
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图5 水稻和拟南芥中 mRNA 假尿苷(Ψ)位点的全面碱基分辨率图谱

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图6 Ψ 修饰影响拟南芥幼苗中 mRNA 的稳定性和翻译过程

研究结论

本研究使用 BID-seq 技术绘制了多种植物不同组织的 RNA Ψ 修饰图谱,揭示了植物中 rRNA、tRNA 和 mRNA 的 Ψ 修饰对翻译的多层调控机制。这些发现为深入理解植物 RNA Ψ 修饰的功能提供了重要依据,也为后续研究植物生长发育过程中的转录后调控机制奠定了基础。

参考文献
Li H, et al. Quantitative RNA pseudouridine maps reveal multilayered translation control through plant rRNA, tRNA and mRNA pseudouridylation Nature Plants. 2025
doi:10.1038/s41477-024-01894-7
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